Détail d’une coupe transversale d’un organoïde rétinien. Les différentes structures tissulaires sont rendues visibles par des couleurs différentes. Crédit : Wahle et al. Nature Biotechnology 2023
Quels types de cellules peut-on trouver dans les différents tissus humains, et où ? Quels gènes sont actifs dans ces cellules individuelles et quelles protéines peuvent être identifiées en leur sein ? Un atlas spécialisé devrait fournir des réponses détaillées à ces questions et à d’autres encore. Cet atlas permettra notamment d’élucider la manière dont les différents tissus prennent forme au cours du développement embryonnaire et les causes sous-jacentes des maladies.
Dans le cadre de l’élaboration de cet atlas, les chercheurs ont pour objectif de cartographier non seulement des tissus prélevés directement sur l’homme, mais aussi des structures appelées organoïdes. Il s’agit d’agrégats de tissus tridimensionnels cultivés en laboratoire et qui se développent de la même manière que les organes humains, bien qu’à plus petite échelle.
« L’avantage des organoïdes est que nous pouvons intervenir dans leur développement et tester des substances actives sur eux, ce qui nous permet d’en savoir plus sur les tissus sains et les maladies », explique Barbara Treutlein, professeur de biologie quantitative du développement au département de science et d’ingénierie des biosystèmes de l’ETH Zurich à Bâle.
Pour contribuer à l’élaboration d’un tel atlas, Barbara Treutlein, en collaboration avec des chercheurs des universités de Zurich et de Bâle, a mis au point une approche permettant de rassembler et de compiler un grand nombre d’informations sur les organoïdes et leur développement. L’équipe de recherche a appliqué cette approche aux organoïdes de la rétine humaine, qu’elle a obtenus à partir de cellules souches.
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Plusieurs protéines visibles simultanément
Au cœur des méthodes utilisées par les scientifiques pour leur approche se trouve la technologie 4i : imagerie par immunofluorescence indirecte itérative. Cette nouvelle technique d’imagerie permet de visualiser plusieurs dizaines de protéines dans une fine section de tissu à haute résolution en utilisant la microscopie à fluorescence. La technologie 4i a été développée il y a quelques années par Lucas Pelkmans, professeur à l’Université de Zurich et co-auteur de l’étude qui vient d’être publiée dans la revue scientifique Nature Biotechnology. C’est dans cette étude que les chercheurs ont appliqué pour la première fois cette méthode à des organoïdes.
Habituellement, les chercheurs utilisent la microscopie à fluorescence pour mettre en évidence trois protéines dans un tissu, chacune avec un colorant fluorescent différent. Pour des raisons techniques, il n’est pas possible de colorer plus de cinq protéines à la fois. Dans la technologie 4i, trois colorants sont utilisés, mais ils sont éliminés de l’échantillon de tissu après que les mesures ont été prises, et trois nouvelles protéines sont colorées. Cette étape a été réalisée 18 fois par un robot et le processus a duré 18 jours au total. Enfin, un ordinateur fusionne les images individuelles en une seule image de microscopie sur laquelle 53 protéines différentes sont visibles. Elles fournissent des informations sur la fonction des différents types de cellules qui composent la rétine, par exemple les bâtonnets, les cônes et les cellules ganglionnaires.
Les chercheurs ont complété ces informations visuelles sur les protéines rétiniennes par des informations sur les gènes lus dans les cellules individuelles.
Haute résolution spatiale et temporelle
Les scientifiques ont effectué toutes ces analyses sur des organoïdes d’âges différents et donc à différents stades de développement. Ils ont ainsi pu créer une série temporelle d’images et d’informations génétiques décrivant l’ensemble du développement des organoïdes rétiniens sur 39 semaines. « Nous pouvons utiliser cette série temporelle pour montrer comment le tissu organoïde se construit lentement, quels types de cellules prolifèrent et à quel moment, et où se situent les synapses. Ces processus sont comparables à ceux de la formation de la rétine au cours du développement embryonnaire », explique Gray Camp, professeur à l’université de Bâle et auteur principal de cette étude.
Les chercheurs ont publié leurs images et d’autres résultats sur le développement de la rétine sur un site web accessible au public : EyeSee4is.
D’autres types de tissus sont prévus
Jusqu’à présent, les scientifiques ont étudié le développement d’une rétine saine, mais à l’avenir, ils espèrent perturber délibérément le développement des organoïdes rétiniens à l’aide de médicaments ou de modifications génétiques. « Cela nous permettra de mieux comprendre des maladies telles que la rétinite pigmentaire, une maladie héréditaire qui entraîne la dégénérescence progressive des récepteurs de la rétine sensibles à la lumière et, à terme, la cécité », explique M. Camp. Les chercheurs veulent savoir quand ce processus commence et comment il peut être arrêté.
Treutlein et ses collègues travaillent également à l’application de la nouvelle approche de cartographie détaillée à d’autres types de tissus, tels que différentes sections du cerveau humain et divers tissus tumoraux. Petit à petit, cela permettra de créer un atlas qui fournira des informations sur le développement des organoïdes et des tissus humains.
Référence : « Multimodal spatiotemporal phenotyping of human retinal organoid development » par Philipp Wahle, Giovanna Brancati, Christoph Harmel, Zhisong He, Gabriele Gut, Jacobo Sarabia del Castillo, Aline Xavier da Silveira dos Santos, Qianhui Yu, Pascal Noser, Jonas Simon Fleck, Bruno Gjeta, Dinko Pavlinić, Simone Picelli, Max Hess, Gregor W. Schmidt, Tom T. A. Lummen, Yanyan Hou, Patricia Galliker, David Goldblum, Marton Balogh, Cameron S. Cowan, Hendrik P. N. Scholl, Botond Roska, Magdalena Renner, Lucas Pelkmans, Barbara Treutlein et J. Gray Camp, 8 mai 2023, Nature Biotechnology.
DOI: 10.1038/s41587-023-01747-2